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抗體蛋白純化中的緩沖劑選擇及其影響因素

更新時間:2023-11-02   點擊次數(shù):1584次

此前,艾偉拓產(chǎn)品團隊通過多期軟文與視頻,分析了生物制劑中緩沖體系的重要作用及篩選考量,歡迎您前往艾偉拓公眾號對之前的幾篇文章進行回顧。


本期,艾偉拓產(chǎn)品團隊延續(xù)這一話題,對抗體等蛋白制劑在純化工藝中的緩沖體系選擇進行討論。


抗體等蛋白類生物制劑的聚集,可能會影響產(chǎn)品的潛在免疫原性,其電荷異質(zhì)性也可能影響treatment的安全性和有效性。


此前,我們主要將目光聚焦于成品制劑的穩(wěn)定性。但值得注意的是,抗體蛋白在加工純化等工藝過程中的穩(wěn)定性也需要給予關(guān)注。為此,艾偉拓產(chǎn)品團隊結(jié)合一篇來自印度理工學院的研究論文,對抗體蛋白純化主要工藝步驟中的緩沖體系選擇進行討論。



01 蛋白A親和層析


蛋白A親和層析是抗體產(chǎn)品純化工藝中普遍存在的捕獲步驟,Protein A的成功是由于其特別而重要的能力,可以有效地捕獲抗體蛋白產(chǎn)物(回收率為95-99%),同時去除絕大多數(shù)宿主細胞雜質(zhì)(宿主細胞蛋白質(zhì)和核酸)。


蛋白A的洗脫通常在低pH下進行,隨后在低pH下進行病毒失活。然而,低pH與抗體蛋白的聚集有關(guān),這是由于Fc結(jié)構(gòu)域的結(jié)構(gòu)變化導致洗脫過程中可溶性高分子量聚集體和/或不溶性沉淀物的增加。


使用SEC(分子排阻色譜)分析抗體聚集(圖1A)??梢钥闯觯?°C和30°C下,即使在無鹽緩沖液中保存長達7天,抗體蛋白聚集程度的增加也很小。only的例外是檸檬酸緩沖液,即使在沒有鹽的情況下也能觀察到相當數(shù)量的聚集。


鹽的加入(離子強度~0.2 ~ 0.3 mol/L)幾乎在所有情況下都能突出提高抗體蛋白聚集程度,在30℃時效果更明顯。



由此可以得出初步結(jié)論:


① 鹽和高溫的結(jié)合導致抗體蛋白聚集性突出增加;


② 與醋酸鹽和甘氨酸緩沖液相比,檸檬酸緩沖液傾向于導致更高的蛋白聚集,特別是在高溫下。


因此,建議在低溫條件下進行蛋白A親和層析并保存層析產(chǎn)物,如果保持在較高的溫度下,則產(chǎn)物保持時間應(yīng)限制在幾個小時內(nèi),盡快進入下一個純化處理步驟。


02 陽離子交換層析


對于抗體類藥物而言,蛋白聚集是較大的不穩(wěn)定性來源。此外,電荷異質(zhì)性也會導致抗體蛋白的產(chǎn)品異質(zhì)性。


離子交換層析廣泛應(yīng)用于抗體蛋白純化工藝,研究表明該步驟中電荷異質(zhì)性是影響抗體蛋白穩(wěn)定性的主要因素。圖3A為該研究選擇的不同緩沖條件下抗體蛋白電荷異質(zhì)性隨時間的變化數(shù)據(jù)。



從總體上看,隨著時間的推移,主峰含量呈下降趨勢,其中磷酸鹽緩沖液(pH 6.5)的下降幅度較大,磷酸鹽緩沖液(pH 7.5)的下降幅度較小。同時,鹽的加入使主峰含量降低。


對于醋酸鹽和檸檬酸鹽緩沖液,發(fā)現(xiàn)主峰含量在1周內(nèi)的變化為小于2%。


在pH為6.5時,磷酸鹽緩沖液中抗體蛋白的主峰含量發(fā)生了明顯變化,從圖3B中可以看出,時間和pH值對帶電變異體的形成都起著重要的作用。


從圖3A中也可以看出,在pH為7.5時,磷酸鹽緩沖液中抗體蛋白的主峰含量變化可以忽略不計,而在pH為6.5時,相同的緩沖液發(fā)生了突出變化。在pH值為6.5時觀察到的一個有趣現(xiàn)象是,隨著時間的推移,主峰含量先降低后增加。


03 陰離子交換層析


圖4A顯示了所選擇的不同緩沖條件下(Tris-HCl pH 7.2和Tris-HCl pH 8)主峰含量隨時間變化的數(shù)據(jù)??梢钥闯?,在pH 7.2時,變化不突出。


然而,在pH值為8時,抗體蛋白產(chǎn)物的電荷異質(zhì)性發(fā)生了相當大的變化,在較高的溫度下變化更大。鹽的存在對主峰含量的影響很小。



圖4B展示了統(tǒng)計建模的結(jié)果??梢钥闯?,與陽離子交換層析一樣,pH和時間對確定主峰含量起關(guān)鍵作用。


與之前一樣,用pH為8的Tris-HCl緩沖液對數(shù)據(jù)構(gòu)建等高線圖??梢钥闯?,隨著溫度的升高,設(shè)計空間減小。允許的離子強度隨著保持時間的增加而降低,直到100 h后超過允許的極限。在30℃時,離子強度不建議大于0.05,純化中間產(chǎn)品保持時間不建議超過60h,以避免主峰含量低于限度。


04 討論


低pH導致抗體蛋白聚集。在遠離pI的低pH條件下,抗體蛋白是高電荷的,導致電荷排斥,這使蛋白構(gòu)象不穩(wěn)定,這種結(jié)構(gòu)擾動會促進抗體的展開介導聚集。這是常規(guī)蛋白A層析和病毒滅活過程步驟的條件下抗體蛋白突出聚集的主要原因。


在高pH (pH 8,接近蛋白的pI)的條件下,觀察到抗體蛋白的電荷異質(zhì)性增加。主峰含量的下降是由于酸性變體的增加導致。天冬氨酸殘基的脫酰胺化是導致抗體降解和療效下降的常見原因。這也是電荷異質(zhì)性在離子交換層析步驟中突出影響蛋白穩(wěn)定性的主要原因。


05 小結(jié)


該研究發(fā)現(xiàn),蛋白聚集是蛋白A親和層析和病毒失活步驟較大允許保持時間的主要決定因素,而電荷異質(zhì)性的變化決定了陽離子交換和陰離子交換步驟的較大允許保持時間。這其中,適宜緩沖體系的選擇對抗體蛋白在純化過程中的穩(wěn)定發(fā)揮著很大的作用。


在常見的蛋白A親和層析條件下,高離子濃度和高溫會導致抗體蛋白聚集突出增加;緩沖體系選擇方面,與醋酸鹽和甘氨酸緩沖液相比,檸檬酸緩沖液傾向于導致更高的蛋白聚集。而在離子交換層析中,離子強度、溫度及pH值對抗體蛋白的電荷異質(zhì)性有較大影響。


總而言之,除了制劑中的緩沖體系,還應(yīng)關(guān)注抗體等蛋白制劑在蛋白純化等過程工藝步驟中的緩沖體系選擇,不同的緩沖體系(種類,pH,離子濃度)會對抗體蛋白的穩(wěn)定性產(chǎn)生不同程度的影響,直接影響中間產(chǎn)物的較大允許保持時間,進而影響抗體制劑的穩(wěn)定性與treatment效果。


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